ПІДГОТОВКА ДО АНАЛІЗУ

Аналіз крові.
  • Приймання їжі.
    • Кров рекомендується здавати вранці, натщесерце, з 8 до 11 години.
    • Не вживати жирну їжу за кілька годин до здачі аналізу, бажано не їсти протягом 4 годин – висока концентрація жирів в крові може перешкодити будь-якого дослідження.
    • Для визначення параметрів ліпідного профілю і глюкози кров здають строго натщесерце, після 12-14 годинного голодування.
    • Незадовго до взяття крові випити 1-2 склянки звичайної негазованої води, це знизить в’язкість крові, і взяти достатній для дослідження обсяг біоматеріалу буде простіше, крім того, це знизить ймовірність утворення згустків в пробірці.

 

  • Лікарські засоби.
    • Якщо Ви приймаєте будь-які лікарські препарати, то слід проконсультуватися з Вашим лікуючим лікарем про доцільність проведення тесту під час лікування і про можливість скасування прийому препарату напередодні дослідження.
    • У зв’язку з цим рекомендується при здачі аналізів на тлі прийому лікарських препаратів, вказати цей факт в бланке- напрямку.
    • Кров береться перед прийомом медикаментів!!!

 

  • Фізичні навантаження.Для того щоб виключити вплив фізичного навантаження і психоемоційних факторів в день здачі аналізів рекомендується:
    • Не займатися спортом.
    • Виключити підвищені емоційні навантаження.
    • Утриматися від вживання алкоголю протягом 72 годин до здачі аналізу.
    • Не палити як мінімум за 30 хвилин до взяття крові.
    • За кілька хвилин перед взяттям крові прийняти зручне положення (сісти), розслабитися, заспокоїтися.

 

  • Фізіологічний стан жінки.
    Для ряду гормональних досліджень має значення фаза менструального циклу. Для отримання коректних результатів аналізів рекомендується:

    • Уточнити оптимальні дні менструального циклу (або термін вагітності) для здачі -крові на фолікулостимулюючий гормон (ФСГ), лютеїнізуючого гормону (ЛГ), прогестерон, естрадіол, андростендіон, 17-гідроксіпрогестерон, пролактин, а також на специфічні маркери: ингибин В і антімюллеровскій гормон
    • При оформленні направітельного бланка необхідно вказати фазу менструального циклу або термін вагітності – це гарантує отримання достовірних результатів дослідження з коректно зазначеними діапазонами нормальних (референсних) значень.

     

  • Важливо: щоб оцінка результатів Ваших досліджень при спостереженні в динаміці була коректною і порівнянної, рекомендується повторні дослідження проводити в одній і тій же лабораторії, в один і той же час, тому що в різних лабораторіях можуть застосовуватися різні методи дослідження і одиниці вимірювання.
    P. S. Переконливе прохання зберігати направлення на аналізи для передачі співробітникам «Лабораторії др. Рьодгера». Це дозволить уникнути непорозумінь при оформленні аналізів в лабораторії.
Дослідження сечі.

Аналізи разової порції сечі

  • Напередодні дослідження (за 10-12 годин) не рекомендується вживати: алкоголь, гостру, солону їжу, харчові продукти, що змінюють колір сечі (наприклад, буряк, морква).
  • У міру можливості виключити прийом сечогінних препаратів.
  • Жінкам дослідження рекомендується проводити до менструації або через 2 дні після її закінчення.

  • Перед здачею аналізу провести ретельний туалет зовнішніх статевих органів.
  • Жінки перед забором сечі вводять гінекологічний тампон в піхву.
  • Чоловікам – ретельний туалет зовнішніх статевих органів з відкриттям головки статевого члена.
  • Немовлятам – після ретельного туалету статевих органів, бажано збирати сечу в мочеприемники. Сеча, вичавлений з памперса, дослідженню не підлягає.
  • Збір сечі здійснюється в спеціальний одноразовий контейнер, після чого він щільно закручується і доставляється в лабораторію.

Підготовка до дослідження «Катехоламіни в сечі»

  • Протягом 3-х днів перед здачею сечі не можна застосовувати препарати, що містять раувольфію, кофеїн, нітрогліцерин, теофілін, етанол.
  • Бажано не приймати інші лікарські препарати, а також харчові продукти, що містять серотонін (наприклад, банани, шоколад, сири), не вживати алкоголь.
  • Уникати стресів, куріння, фізичних навантажень, больових впливів, які ведуть до фізіологічного підйому катехоламінів.
Дослідження калу.
  • Перед здачею аналізу виключити прийом проносних, клізм, інвазивні маніпуляції. При зборі калу уникати контакту з водою (дезінфікуючими засобами!), Сечею, виключити можливість потрапляння слизу.
  • Не допускається збір зразків калу з унітазу!
  • Кал, отриманий після клізми, для досліджень не використовується.
  • Для досліджень в калі рекомендується ранковий стул.
  • Виділення яєць гельмінтів, а також цист найпростіших з калом безпосередньо залежить від життєвого циклу паразитів. З цієї причини результати дослідження можуть виявитися негативними навіть в разі наявності зараження. Для найбільш достовірних результатів рекомендується триразове дослідження калу з інтервалом в 3-7 днів.
Дослідження урогенітального матеріалу.

Жінки.

  • Виключити протягом 24-48 годин до забору матеріалу спринцювання, введення в піхву медикаментів, тампонів.
  • Протягом 24-48 годин до забору матеріалу дотримуватися статевий спокій.
  • Забір матеріалу не проводиться під час менструації, рекомендується проводити забір до менструації або через 2 дні після її закінчення.
  • Забір матеріалу повинен проводитися до бимануального обстеження і проведення розширеної кольпоскопії.

Чоловіки.

  • Протягом 2-3 годин утриматися від сечовипускання.
Мікробіологічні дослідження.
    • Забір матеріалу проводиться до початку лікування антибактеріальними імунобіологічними, протигрибковими препаратами.
    • При контролі лікування (після закінчення курсу лікування): без застосування імунобіологічних препаратів через 5-7 днів; із застосуванням імунобіологічних препаратів не менш ніж через 14 днів.
    • Забір матеріалу для мікробіологічних досліджень проводиться у вівторок і четвер до 12.00.

 

Матеріал із зіву.

      • Мазок із зіву (глотки) збирають натщесерце або через 3-4 години після прийому їжі.
      • Не чистіть зуби і не полоскати рот.
      • Не застосовувати препарат антисептики.

 

Матеріал з носу.
Перед взяттям мазків можна промивати носові ходи.

Матеріал з ока
У день забору матеріалу не вмиватися (очі).
Забір матеріалу на дослідження проводить Ваш лікуючий лікар і матеріал доставляється в лабораторію до 12.00 годин вівторок, четвер.

Матеріал з зовнішнього вуха.
Забір матеріалу на дослідження проводить Ваш лікар і матеріал доставляється в лабораторію до 12.00 годин вівторок, четвер.

Урогенітальний матеріал.

Жінки

      • Протягом трьох днів виключити спринцювання і постановку вагінальних свічок, мазей, тампонів.
      • Протягом трьох днів виключити статеві контакти.
      • Протягом 2-3 годин утриматися від сечовипускання.
      • Матеріал не можна здавати під час менструації (тільки через три дні після її закінчення).

Чоловіки

      • Протягом доби виключити тепловий вплив на область статевих органів – лазня, сауна.
      • Протягом 2-3 годин утриматися від сечовипускання.

 

Бакпосів секрету передміхурової залози
Забір матеріалу на дослідження проводить Ваш лікар.

Бакпосів еякуляту
Забір матеріалу проводиться в стерильний контейнер і доставляється в лабораторію до 12:00 по вівторках і четвергах.

Бакпосів сечі
Протягом 2-3 годин утриматися від сечовипускання.

Дослідження волосся.
  • Волосся з голови – найкращий біоматеріал для дослідження. Волосся з інших ділянок тіла слід використовувати тільки при відсутності волосся на голові.
  • Припинити використання лікарських засобів для волосся за 2 тижні до здачі волосся на аналіз.
  • Пофарбовані, знебарвлені, піддані хімічній завивці волосся непридатні для дослідження. Необхідно дочекатися, коли волосся відросте в кількості, достатній для збору зразка волосся.
  • Волосся повинні бути чистими і сухими (бажано вимити волосся не пізніше, ніж за добу до збору волосся). Перед дослідженням не допускається нанесення на волосся будь-яких косметичних або лікарських засобів (кремів, масел, гелів і т. д.).
  • Виключити професійний контакт волосся з зовнішніми забрудненнями (зварювання, гірничодобувна промисловість) між миттям голови і процедурою збору волосся.
Дослідження нігтів.

Спеціальні умови підготовки пацієнта не потрібні.

Дослідження мокротиння.

Перед збором мокротиння рекомендується почистити зуби, прополоскати рот і горло кип’яченою водою.

ЗАБІР МАТЕРІАЛУ

Забір венозної крові.

Рекомендації загальні:

  • Пацієнт натщесерце, вранці з 8:00 до 11:00 години.
  • При температурі в кабінеті 18-30 °C.
  • Перед прийомом медикаментів.

Рекомендації по часу забору крові:

Обстеження
Час взяття крові
7.00 – 12.00 12.00 – 17.00 17.00 – 7.00
Загальний аналіз крові
Коагулограма
С-пептид
Глікозірований гемоглобін
Біохімічні дослідження
Гормональні дослідження
Маркери інфекційних захворювань
Онкомаркери
Генетичні дослідження
Аутоімунні антитіла
Алергени

Техніка забору венозної крові:

      1. Забір венозної крові проводиться вакутайнером:

    2. Послідовність забору крові в вакутайнери:

    • посів крові;
    • нативная кров (сироватка);
    • цитрат (згортання);
    • ЕДТА крові (гематологія);
    • фторид крові (глюкоза, лактат).

 

Помилки при проведенні забору крові:

Гемоліз – це руйнування еритроцитів в зразку крові, з виходом з них різних біологічно активних речовин в плазму. Наявність в плазмі гемоглобіну може привести до неправильної оцінки результату дослідження.

У зразках капілярної крові гемоліз виникає в два рази частіше, тому рекомендується для всіх досліджень використовувати венозну кров.

Медична сестра повинна завжди звертати увагу на колір отриманої після преаналітичного етапу крові. У разі, якщо є ознаки гемолізу, кров не слід відправляти в лабораторію (ріс1). У такому випадку потрібно взяти кров на аналіз повторно!

stepen_gemoliza_v_obrazcah_krovi.jpg

Малюнок 1. Ступінь гемолізу в зразках крові.

 

Основні правила взяття крові, які допоможуть уникнути гемолізу:

  • Після обробки поля для ін’єкції антисептиком, протріть це місце сухою серветкою.
  • Накладати джгут потрібно на невеликий час (кілька секунд). Відразу після входу в вену джгут потрібно зняти.
  • Після отримання зразка крові пробірку слід перемішувати плавними рухами.pravila_vzyatiya_krovi.jpg
  • Дотримуватися температурного режиму зберігання зразків крові. Чи не тримати пробірки з біологічним матеріалом при кімнатній температурі довше 30 хв.
  • Зразки крові, які підлягають заморожуванню, категорично забороняється розморожувати і заморожувати.
  • При взятті капілярної крові не слід сильно натискати на місце поруч з місцем проколу для посилення потоку крові. Збір крові з поверхні шкіри краєм мікропробіркі не допускається. Кров повинна самостійно стікати в пробірку.
  • Взяття капілярної крові для загального аналізу допускається у віці до 12 років.
Забір матеріалу з урогенітального тракту у жінок.

Мікроскопія урогенітальних виділень

Особливості забору

  • Забір біоматеріалу проводиться з трьох ділянок: зовнішній отвір цервікального каналу (C), заднє склепіння піхви (V), зовнішній отвір сечовипускального каналу (U).
  • Матеріал наноситься на відповідне маркування скло м’якими рухами в центрі, рівномірно тонким шаром на площі 1-2 см2.gonoreya-172.jpg
  • Неправильним є нанесення матеріалу товстим шаром, краплею, невеликим мазком.
  • Після забору предметні скельця необхідно висушити на повітрі при кімнатній температурі протягом 30 хвилин.
  • Після повного висихання мазок поміщають в індивідуальний поліетиленовий пакет з замком (гриппер) і доставляють в лабораторію.

Техніка забору:

  • Ввести гінекологічне дзеркало (дзеркало Куско) і встановити дзеркало в положення, при якому найбільш чітко можливо оглянути шийку матки, заднє склепіння піхви (оголити шийку в дзеркалах).
  • Провести стерильним урогенітальним зондом по поверхні слизової піхви в області заднього склепіння і нанести мазок на перше предметне скло (V).
  • Надлишок слизу і рясних виділень видалити з поверхні шийки матки за допомогою сухого ватного тампона або спеціального тампона Dacron.
  • Ввести стерильний урогенітальний зонд в цервікальний канал на глибину 1-2 см, зібрати матеріал обережними обертальними рухами протягом 3-5 секунд і нанести мазок на друге предметне скло (C).
  • Витягти гінекологічне дзеркало.
  • Ввести стерильний урогенітальний зонд в уретру на глибину 1-1.5 см, акуратно, не поранивши слизову, декількома обертовими рухами провести зішкріб епітеліальних клітин і нанести мазок на третє предметне скло (U).
  • Предметні скла з матеріалом поміщають в індивідуальний поліетиленовий пакет з замком (гриппер), і доставляють в лабораторію c заповненим скеруванням.

Цитологічне дослідження шийки матки на склі (ПАП-тест)

Особливості забору:

  • Використовуються тонкі предметні скельця з матовим краєм.
  • Матеріал беруть до проведення мануальних досліджень і кольпоскопії.
  • У матеріалі з шийки матки повинні бути присутніми клітини ендоцервіксу, екзоцервікса і перехідної зони (зони трансформації).
  • Для забору матеріалу використовують ендоцервікальную щіточку, шпатель Ейра, «метелкообразную» щіточку.
  • Матеріал наноситься на скло м’якими рухами в центрі, рівномірно розподіляється на площі 1-2 см2.
  • Неправильним є нанесення матеріалу товстим шаром, краплею, невеликим мазком.
  • Матеріал на склі відразу після нанесення фіксується спеціальним розчином«Cytofix».
  • Предметне скло з матеріалом поміщають в індивідуальний поліетиленовий пакет з замком (гриппер), і доставляють в лабораторію c заповненим напрямком і даними кольпоскопії.

Техніка забору шпателем Ейра та ендоцервікальної щіточкою.

  • Ввести гінекологічне дзеркало (дзеркало Куско).
  • Встановити дзеркало в положення, при якому найбільш чітко можливо оглянути шийку матки, заднє склепіння піхви (оголити шийку в дзеркалах).
  • Надлишок слизу і рясних виділень на шийці матки видалити за допомогою сухого ватного тампона або спеціального тампона Dacron.
  • Пластиковий шпатель Ейра встановлювати так, щоб він стосувався зони екзоцервікса і зони трансформації і, щільно притискаючи до поверхні екзоцервікса, обертати його на 360 ° за годинниковою стрілкою.zond6.jpg
  • Нанести матеріал на поверхню предметного скла.
  • Ендоцервікальную щітку дбайливо ввести в зовнішній зів шийки матки, обережно направляючи центральну частину щітки по осі цервікального каналу.093917_o.jpg
  • Наконечник щітки повернути тричі на 360 ° за годинниковою стрілкою і двічі на 360 ° проти годинникової стрілки, досягаючи тим самим взяття достатньої кількості клітин з ендоцервіксу.
  • Нанести матеріал на поверхню предметного скла.
  • Предметне скло з матеріалом поміщають в індивідуальний поліетиленовий пакет з замком (гриппер), і доставляють в лабораторію c заповненим напрямком і даними кольпоскопії.

Техніка забору «метелкообразной» щіточкою.

  • Надлишок слизу і рясних виділень на шийці матки видалити за допомогою сухого ватного тампона або спеціального тампона Dacron.
  • Вставить специальную «метелкообразную» щеточку в цервикальный канал достаточно глубоко, чтобы короткие щетинки касались зоны эктоцервикса.full_endotservikalnaya-shchetochka-tip-vbb2.jpg
  • Осторожно нажать и повернуть по часовой стрелке 5 раз.
  • Нанести материал на поверхность предметного стекла. Сразу после нанесения на предметное стекло материал зафиксировать специальным раствором. tehnika_zabora_metelkoobraznoy_shchetochkoy2.jpg
  • Предметное стекло с материалом помещают в индивидуальный полиэтиленовый пакет с замком (гриппер), и доставляют в лабораторию c заполненным направлением и данными кольпоскопии.

Цитологическое исследование шейки матки по методу жидкостной цитологии (система Thin Prep).

Особенности забора

  • Материал из шейки матки помещается не на предметное стекло, а во флаконы со специальной средой.
  • Материал берут до проведения мануальных исследований и кольпоскопии.
  • В материале из шейки матки должны присутствовать клетки эндоцервикса, экзоцервикса и переходной зоны (зоны трансформации).
  • Для забора материала используют эндоцервикальную щеточку, шпатель Эйра, «метелкообразную» щеточку.
  • Не оставлять щеточку во флаконе с жидкой средой!
  • На флаконе указываются идентификационные данные пациентки и заполняется регистрационная форма с данными анамнеза и кольпоскопии.

Техника забора шпателем Эйра и эндоцервикальной щеточкой.

tehnika_zabora_shpatelem_eyra_i_endocervikalnoy_shchetochkoy.jpg

  • Ввести гинекологическое зеркало (зеркало Куско).
  • Установить зеркало в положение, при котором наиболее четко возможно осмотреть шейку матки, задний свод влагалища (обнажить шейку в зеркалах).
  • Пластиковый шпатель Эйра устанавливать так, чтобы он касался зоны экзоцервикса и зоны трансформации и вращать его на 360 °, плотно прижимая к поверхности экзоцервикса.
  • Шпатель вынуть и сразу погрузить в раствор флакона, 10 раз сделать вращательное движение для дальнейшего перемещения материала из шпателя в жидкую среду.
  • Эндоцервикальную щеточку бережно ввести в наружный зев шейки матки, осторожно направляя центральную часть щетки по оси цервикального канала.
  • Наконечник щеточки повернуть трижды на 360 ° по часовой стрелке и дважды на 360 ° против часовой стрелки, достигая тем самым взятия достаточного количества клеток с эндоцервикса и зоны трансформации.
  • Щеточку вынуть и сразу погрузить в раствор флакона, 10 раз сделать вращательное движение для дальнейшего перемещения материала из шпателя в жидкую среду.
  • Эндоцервикальная щеточка и шпатель погружаются в емкость с дезинфицирующим раствором.
  • Плотно закрываем крышку флакона до упора.
  • Хранить материал при комнатной температуре.

Техника забора «метелкообразной» щеточкой.

tehnika_zabora_metelkoobraznoy_shchetochkoy_0.jpg

  • Ввести гинекологическое зеркало (зеркало Куско).
  • Установить зеркало в положение, при котором наиболее четко возможно осмотреть шейку матки, задний свод влагалища (обнажить шейку в зеркалах).
  • Вставить специальную «метелкоподобную» щеточку в цервикальный канал достаточно глубоко, чтобы короткие щетинки касались зоны эктоцервикса.
  • Осторожно нажать и провернуть по часовой стрелке 5 раз.
  • Щеточку быстро извлечь и сразу погрузить в раствор флакона, 10 раз нажать щеточкой в нижней части (дне) флакона, и в заключение- вихреобразное движение – для дальнейшего перемещения материала из щеточки в жидкую среду.
  • Щеточка погружается в емкость с дезинфицирующим раствором. Не допускается оставлять щеточку во флаконе с жидкой средой!
  • Плотно закрываем крышку флакона до упора.

Вирус папилломы человека (ВПЧ) высокого и низкого риска (ПЦР).

Особенности:

  • При заборе материала рекомендуется использовать виниловые или латексные перчатки без талька.
  • Для сбора материала и транспортировки используется специальный комплект «PapilloCheck».

specialnyy_komplekt_papillocheck.jpg

Техника забора с использованием «PapilloCheck».

  • Ввести гинекологическое зеркало (зеркало Куско).
  • Установить зеркало в положение, при котором наиболее четко возможно осмотреть шейку матки, задний свод влагалища (обнажить шейку в зеркалах).
  • Перед забором материала необходимо удалить излишки слизи с помощью сухого ватного тампона или специального тампона Dacron.
  • Ввести щеточку на глубину 1-1,5 см в цервикальный канал пока щетинки щеточки не достанут эндоцервикса.
  • Повернуть щеточку 3 раза против часовой стрелки не позволяя при этом полностью войти в цервикальный канал.
  • Осторожно вытащить щеточку таким образом, чтобы щетинки не коснулись других поверхностей.
  • Щеточка помещается в транспортную пробирку, тщательно промывается в среде.
  • Осторожно поломайте стержень щеточки по линии, соблюдая осторожность во избежание разбрызгивания содержимого.
  • На пробирке указать вид исследования – ВПЧ.
  • Плотно закрыть пробирку крышкой.
  • Хранить материал при температуре 2-25 С° до 14 дней.

Онкогены Е6/Е7 ВПЧ высокого риска (ПЦР).

Особенности:

  • При заборе материала рекомендуется использовать виниловые или латексные перчатки без талька.
  • Для сбора материала и транспортировки используется специальный комплект «PapilloCheck».

Техника забора с использованием «PapilloCheck».

  • Ввести гинекологическое зеркало (зеркало Куско).
  • Установить зеркало в положение, при котором наиболее четко возможно осмотреть шейку матки, задний свод влагалища (обнажить шейку в зеркалах).
  • Перед забором материала необходимо удалить излишки слизи с помощью сухого ватного тампона или специального тампона Dacron.
  • Ввести щеточку на глубину 1-1,5 см в цервикальный канал пока щетинки щеточки не достанут эндоцервикса.
  • Повернуть щеточку 3 раза против часовой стрелки не позволяя при этом полностью войти в цервикальный канал.
  • Осторожно вытащить щеточку таким образом, чтобы щетинки не коснулись других поверхностей.
  • Щеточка помещается в транспортную пробирку, тщательно промывается в среде.
  • Осторожно поломайте стержень щеточки по линии, соблюдая осторожность во избежание разбрызгивания содержимого.
  • Плотно закрыть пробирку крышкой.
  • На пробирке указать вид исследования – Е6 / Е7.
  • Хранить материал при температуре 2-25 С° до 14 дней.

Урогенитальный хламидиоз и гонорея (ПЦР).

Особенности:

  • При заборе материала рекомендуется использовать виниловые или латексные перчатки без талька.
  • Для сбора материала и транспортировки используется специальный комплект «Multi-Collect» (Abbott).
  • Стерильный влагалищный ватный тампон из набора «Multi-Collect» используется для забора вагинального материала.
  • Стерильный эндоцервикальный ватный тампон из набора «Multi-Collect» используется для забора цервикального материала.
  • Стерильный уретральный ватный тампон из набора «Multi-Collect» используется для забора уретрального материала.

vatnyy_tampon_iz_nabora_multi-collect.jpg

Техника забора из влагалища

  • Стерильный ватный тампон вводится во влагалище осторожно на глубину 5 см.
  • Осторожно поворачивайте тампон в течение 15 – 30 секунд по стенкам влагалища.
  • Осторожно извлекайте тампон из влагалища и помещаем в транспортную пробирку.
  • Осторожно поломайте стержень тампона по линии, соблюдая осторожность во избежание разбрызгивания содержимого.
  • Плотно закрутите крышку.
  • Хранить охлажденным при температуре 2-8 С° до 14 дней

Техника забора из эндоцервикса

  • Ввести гинекологическое зеркало (зеркало Куско).
  • Установить зеркало в положение, при котором наиболее четко возможно осмотреть шейку матки, задний свод влагалища (обнажить шейку в зеркалах).
  • Перед забором материала необходимо удалить излишки слизи с помощью сухого ватного тампона или специального тампона Dacron.
  • Вставьте ватный тампон в канал шейки матки и проверните его по часовой стрелке в течение 10-30 секунд.
  • Осторожно извлечь тампон и поместить в транспортную пробирку.
  • Осторожно поломайте стержень тампона по линии, соблюдая осторожность во избежание разбрызгивания содержимого.
  • Плотно закрутите крышку.
  • Хранение при температуре 2-8 С° до 14 дней, и при температуре -10 С° и ниже до 90 дней.

Микробиологическое исследование

Забор материала производится с помощью специальной пробирки «Swab»

  • Для забора материала из цервикса и влагалища у женщин используют пробирки с красной крышкой (толстый тупфер).mikrobiologicheskoe_issledovaniya.jpg
  • Транспортировать сразу после забора материала при комнатной температуре, максимально 25 С°.
  • Доставка в лабораторию осуществляется – Пн-Чт с 8.00 до 12.00.

Техника забора

  • Ввести гинекологическое зеркало (зеркало Куско).
  • Установить зеркало в положение, при котором наиболее четко возможно осмотреть шейку матки, задний свод влагалища (обнажить шейку в зеркалах).
  • Извлечь тупфер из упаковки и сделать забор материала (мазки) из заднего свода влагалища (цервикального канала).
  • Осторожно извлечь тупфер, избегая касания с другими поверхностями, и поместить в пробирку.
  • Отломать стержень тупфера по метке и плотно закрыть крышку.
  • Промаркировать пробирку и доставить в лабораторию.
Забір матеріалу з уретри у чоловіків.

Мікроскопія уретральних виділень

Особливості забору

  • Матеріал наноситься на відповідне маркування скло м’якими рухами в центрі, рівномірно тонким шаром на площі 1-2 см2.zabor_materiala_iz_uretry_u_muzhchin.jpg
  • Неправильним є нанесення матеріалу товстим шаром, краплею, невеликим мазком.
  • Після забору предметні скельця висушити на повітрі при кімнатній температурі протягом 30 хвилин.
  • Після повного висихання мазок поміщають в індивідуальний поліетиленовий пакет з замком (гриппер) і доставляють в лабораторію з напрямком.
  • Зберігати матеріал при кімнатній температурі до 14 днів.

Техніка забору

  • Попросити пацієнта оголити головку статевого члена шляхом зрушування крайньої плоті.
  • При наявності вільно стікають з уретри виділень видалити їх сухою стерильною серветкою.
  • Ввести зонд урогенітальний в уретру на глибину 3-4 см.
  • Кількома обережними обертальними рухами протягом 3-5 секунд зробити забір біоматеріалу.
  • Витягти зонд з уретри і нанести матеріал рівномірно на предметне скло.

Вірус папіломи людини (ВПЛ) високого та низького ризику (ПЛР).

Особливості

  • При заборі матеріалу рекомендується використовувати вінілові або латексні рукавички без тальку.
  • Для забору і транспортування матеріалу використовується спеціальна стерильна транспортна пробірка з ватним тампоном.virus_papillomy_cheloveka_vpch_.jpg

Техніка забору

  • Попросити пацієнта оголити головку статевого члена шляхом зрушування крайньої плоті.
  • При наявності вільно стікають з уретри виділень видалити їх сухою стерильною серветкою.
  • Ввести тампон в уретру на глибину 3-4 см.
  • Кількома обережними обертальними рухами протягом 3-5 секунд зробити забір матеріалу.
  • Витягти тампон з уретри і помістити тампон в суху пробірку флакон.
  • Залишити в нещільно закритій пробірці протягом 2-3х годин для висушування.
  • Після щільно закрити пробірку, промаркувати і транспортувати в лабораторію.
  • Зберігати матеріал при кімнатній температурі.

Урогенітальний хламідіоз і гонорея (ПЛР).

Особливості

  • При заборі матеріалу рекомендується використовувати вінілові або латексні рукавички без тальку.
  • Для збору матеріалу і транспортування використовується спеціальний комплект «Multi-Collect» (Abbott).
  • Для збору уретрального матеріалу використовують стерильний уретральний ватний тампон і транспортну пробірку «Multi-Collect».
  • Пацієнт повинен утриматися від сечовипускання до забору матеріалу не менше 1 години.

Техніка забору

  • Попросити пацієнта оголити головку статевого члена шляхом зрушування крайньої плоті.
  • При наявності вільно стікають з уретри виділень видалити їх сухою стерильною серветкою.
  • Звільнити стерильний тампон з обгортки «Multi-Collect» і вставити в уретру на глибину 2-4 см.
  • Кількома обережними обертальними рухами протягом 3-5 секунд зробити забір матеріалу.
  • Обережно витягти тампон і помістити в транспортну пробірку.
  • Обережно відламати стрижень тампона по лінії, дотримуючись обережності, щоб уникнути розбризкування вмісту і щільно закрити транспортну пробірку.
  • Промаркувати контейнер і направити в лабораторію.
  • Зберігати матеріал при кімнатній температурі 24 години, охолодженим до 14 днів.

Мікробіологічне дослідження

Особливості

  • При заборі матеріалу рекомендується використовувати вінілові або латексні рукавички без тальку.
  • Забір матеріалу проводиться за допомогою спеціальної пробірки «Swab».
  • Для забору матеріалу з уретри у чоловіків використовують пробірки з помаранчевої кришкою (тонкий тупфер).
  • Транспортувати відразу після забору матеріалу при кімнатній температурі, максимально 25 С °.
  • Доставка в лабораторію здійснюється- Пн-Чт с 8.00 до 12.00.

mikrobiologicheskoe_issledovaniya_0.jpg

Техніка забору

  • Попросити пацієнта оголити головку статевого члена шляхом зрушування крайньої плоті.
  • Витягти тупфер з упаковки “Swab» і зробити мазок з уретри.
  • Помістити тупфер в транспортну пробірку відламати стрижень по мітці.
  • Щільно закрити пробірку, промаркувати і одразу відправити у лабораторію.
Забір матеріалу із зіву (ПЛР, мікробіологічні дослідження).

Особливості:

  • Забір матеріалу проводиться за допомогою спеціальної пробірки «Swab».
  • Для забору матеріалу із зіву використовують пробірки з червоною кришкою (товстий тупфер).tolstyy_tupfer.jpg
  • При заборі матеріалу рекомендується використовувати вінілові або латексні рукавички без тальку.
  • При взятті проби не можна торкатися тампоном слизових щік, язика, ясен, губ.

Техніка забору

  • Попросити пацієнта закинути голову і не рухатися під час проведення забору біоматеріалу.
  • Відкрити упаковку, вийняти тупфер.
  • Взяти тупфер в праву руку, в ліву взяти шпатель.
  • Притиснути мову пацієнта до нижньої частини ротової порожнини шпателем.
  • Зібрати матеріал, по черзі обробляючи тупфером праву мигдалину, праву небную дужку, ліву мигдалину, ліву небную дужку, язичок, на рівні язичка торкнутися зондом задньої стінки глотки.zabor_materiala_iz_zeva2.jpg
  • При наявності в порожнині рота вогнищ запалення або виразки зібрати матеріал з осередків.
  • Вставити тупфером в пробірку і відламати стрижень тупфера по мітці.
  • Щільно закрутити кришку і промаркувати пробірку.
Забір матеріалу з носа (ПЛР, мікробіологічні дослідження).

Особливості:

  • Забір матеріалу проводиться за допомогою спеціальної пробірки«Swab».
  • Для забору матеріалу з носа використовують пробірки з помаранчевої кришкою (тонкий тупфер).tolstyy_tupfer.jpg
  • При заборі матеріалу рекомендується використовувати вінілові або латексні рукавички без тальку.
  • Мазок з носа не підходить для діагностики синуситів.
  • При гаймориті – досліджуваний матеріал аспірат / пунктат.

Техніка забору матеріалу

  • Попросити пацієнта закинути голову і не рухатися під час проведення забору біоматеріалу.
  • Відкрити упаковку, витягти тупфер.
  • Ввести тупфер послідовно в праву і ліву ніздрю і обертальними рухами зібрати матеріал з крил носа і верхнього кута носового отвору.zabor_materiala_iz_nosa2.jpg
  • При наявності в порожнині носа вогнищ запалення або виразки зібрати матеріал з осередків.
  • Вставити тупфер в пробірку і відламати стрижень тупфера по мітці.
  • Щільно закрутити кришку і промаркувати пробірку.
Забір матеріалу з кон'юнктиви (ПЛР, мікробіологічні дослідження)

Особливості:

  • Забір матеріалу проводиться за допомогою спеціальної пробірки«Swab».
  • При заборі матеріалу рекомендується використовувати вінілові або латексні рукавички без тальку.

Техніка забору матеріалу

  • Попросити пацієнта закинути голову і не рухатися під час проведення забору біоматеріалу.
  • Відкрити упаковку, вийняти тупфер.
  • Великим пальцем лівої руки опустити нижню повіку одного з очей, одночасно піднімаючи вказівним пальцем верхню повіку того ж очі, максимально оголюючи кон’юнктиву.
  • Стерильним тупфером, що знаходяться в правій руці, зробити 2-3 кругових руху по кон’юнктиві очі, не торкаючись їм вій.zabor_materiala_iz_konyuktivy2.jpg
  • Вставити тупфер в пробірку і відламати стрижень тупфера по мітці.
  • Щільно закрутити кришку і промаркувати пробірку.
Забір матеріалу з нижнього слухового проходу (ПЛР, мікробіологічні дослідження).

Особливості:

  • Забір матеріалу проводиться за допомогою спеціальної пробірки «Swab».
  • Для забору матеріалу використовують пробірки з помаранчевої кришкою (тонкий тупфер).tolstyy_tupfer.jpg
  • При заборі матеріалу рекомендується використовувати вінілові або латексні рукавички без тальку.
  • Доставка в лабораторію здійснюєтьсяя – Пн-Чт с 8.00 до 12.00.

Техніка забору матеріалу

  • Попросити пацієнта закинути голову і не рухатися під час проведення забору біоматеріалу.
  • Обробляють шкіру навколо зовнішнього слухового проходу 70% спиртом і промивають фізіологічним розчином.
  • За допомогою вологого (самочинного стерильним фізіологічним розчином) тампона з вушного каналу видаляють смітинки і кірки.
  • Матеріал з вогнища беруть стерильним тампоном, що входять до складу транспортної системи «еSwab», інтенсивно обертаючи їм в зовнішньому слуховому проході (але обережно, щоб не пошкодити барабанну перетинку).
  • Вставити тупфер в пробірку і відламати стрижень тупфера по мітці.
  • Щільно закрутити кришку і промаркувати пробірку.
Забір матеріалу з пародонтальних кишень (ПЛР).

Особливості:

  • При заборі матеріалу рекомендується використовувати вінілові або латексні рукавички без тальку.
  • Вміст пародонтальних кишень відбирають за допомогою паперової смужки.
  • Після забору паперовий зонд поміщають в стерильну пробірку.
  • З моменту забору матеріалу до моменту доставки в лабораторію повинно пройти не більше 12 годин.
  • Доставка в лабораторію здійснюється- Пн-Чт с 8.00 до 12.00.

Техніка забору

  • Місце взяття проби попередньо обробити стерильними ватними тампонами.
  • Видалити супрагінгівальние бляшки стерильними кюретками.
  • Ввести стерильний паперовий зонд на 20 секунд в ясенний жолобок так, щоб виключити контакт зі слизовою, поверхнею емалі або коронкою зуба.
  • Паперовий зонд помістити в стерильну пробірку.
  • Зберігання охолодженим при температурі 4-10 С°.

ПОДГОТОВКА МАТЕРИАЛА ДЛЯ ТРАНСПОРТИРОВКИ

Досліджуваний матеріал - кров.

Сироватка.
Якщо матеріал доставляється протягом 2-x годин після забору – то відділення сироватки не потрібно.

Якщо час транспортування в лабораторію складає більше 2-х годин, то необхідно відділення сироватки.

Для цього через 15-30 хв після забору крові – центрифугування при 3000 об / хв протягом 10 хвилин. Після відокремити сироватку в транспортну пробірку без середовища і без наповнювача. Можна використовувати пробірку епіндорф. Пробірку пронумерувати і помістити до моменту транспортування в холодильник при температурі 2-8 С °.

Не заморожувати!

Цитрат, гепарин, ЕДТА крові або плазми.

Після забору крові зразки добре перемішати (5-10 руху, що гойдає, не тремтіла!), Щоб уникнути активацію коагуляції. Відразу після забору крові провести центрифугування при 3000 об / хв протягом 15 хвилин. Після відокремити плазму в транспортну пробірку без середовища і без наповнювача. Можна використовувати пробірку епіндорф. Пробірку пронумерувати і помістити в холодильник до моменту транспортування при температурі 2-8 С °.ОБОВ’ЯЗКОВО ВКАЗАТИ: ЦИТРАТ, ГЕПАРИН, ЕДТА КРОВІ АБО ПЛАЗМИ!

Не заморожувати!

ПРИМІТКА: Для спеціальних досліджень – спеціальні умови (додаток).
Цитрат плазми для коагулограми.

Відразу після забору крові (до 1 години) провести провести центрифугування при 3000 об / хв протягом 15 хвилин. Після відокремити плазму в транспортну пробірку без середовища і без наповнювача. Можна використовувати пробірку епіндорф. Пробірку пронумерувати і помістити в морозильну камеру при температурі -20 С °.

Зразки крові не повинні піддаватися прямому впливу сонячних променів (світлочутливі параметри):

  • білірубін;
  • порфірин;
  • beta-каротін;
  • вітамин A, B (усі), E и K;
  • пірідінолін;
  • неоптерин.

Дослідження, при яких зразки крові не зберігаються в холодильнику:

  • аналіз крові;
  • HLA B27;
  • диференціація лімфоцитів;
  • LDH-ізоєнзим;
  • циклоспорін;
  • матеріал для цитогенетики, хромосомного аналізу;
  • культура крові.
Досліджуваний матеріал - сеча.

З стерильного контейнера відбирається 10 мл сечі в стерильну пробірку і зберігається до моменту відправки в холодильнику при температурі
2-8 С °.

Для мікробіологічного дослідження зберігається при кімнатній температурі не вище 25 С ° і доставляється в лабораторію в короткий проміжок часу після забору.

Досліджуваний матеріал - кал.

Зберігається в холодильнику до моменту транспортування при температурі 2-8 С °.

Досліджуваний матеріал - мазки і зіскрібки з урогенітального тракту.

Мікроскопія урогенітальних виділень – зберігання при кімнатній температурі.

Цитологічне дослідження шийки матки на склі (ПАП-тест) – зберігання при кімнатній температурі.

Цитологічне дослідження шийки матки за методом рідинної цитології – (система Thin Prep) – зберігання при кімнатній температурі.

Вірус папіломи людини (ВПЛ) високого та низького ризику (ПЛР) – зберігання матеріалу при температурі 2-25 С ° до 14 днів.

Онкогени Е6 / Е7 ВПЛ високого ризику (ПЛР) – зберігання матеріалу при температурі 2-25 С ° до 14 днів.
Урогенітальний хламідіоз і гонорея (ПЛР) – зберігання при температурі 2-8 С ° до 14 днів, і при температурі -10 С ° і нижче до 90 днів.
Мікробіологічне дослідження (культивування і чутливість до антибіотиків, аероби, анаероби, скринінг мультирезистентних збудників (MRSA, VRE, 3 / 4MRGN), мікоплазма, уреаплазма)– транспортувати відразу після забору матеріалу при кімнатній температурі (макс 25 С °).

Досліджуваний матеріал - мазки із зіву.

Мікробіологічне дослідження – патогенні бактерії (наприклад В- стрептокок, гриби, Corynebacterium diphtheriae) – транспортувати відразу після забору матеріалу при кімнатній температурі (макс 25 С°).

ПЛР – Influenza A / B- грип, RSV- респіраторний сентіціальний вірус – зберігання в холодильнику при температурі 4-8 С °.

Досліджуваний матеріал - мазки з носа.

Мікробіологічне дослідження (аероби, MRSA, анаероби) – транспортувати відразу після забору матеріалу при кімнатній температурі (макс 25 С °).
ПЛР – Bordetella pertussis/ parapertussis – коклюш / паракоклюш, Influenza A/B- грип, RS –
респіраторний сентіціальний вірус
– зберігання в холодильнику при температурі 4-8 С°.

Досліджуваний матеріал - мазки з кон'юнктиви.

Мікробіологічне дослідження (аероби, дріжджі, актиноміцети) – транспортувати відразу після забору матеріалу при кімнатній температурі (макс 25 С °).

ПЛР (Chlamydia trachomatis, Herpes simplex- Virus) – зберігання в холодильнику при температурі4-8 С°.

Досліджуваний матеріал - мазки з зовнішнього слухового проходу.

Мікробіологічне дослідження (аероби) – зберігання при кімнатній температурі.

Досліджуваний матеріал - мазки-відбитки з пародонтального кишені.

ПЛР-маркерів пародонтиту – зберігання при температурі 4-10 С°.